1. Kaedah smear adalah kaedah penyediaan slaid dengan melapisi bahan secara merata pada slaid kaca.
Bahan-bahan smear termasuk organisma sel tunggal, alga kecil, darah, cecair budaya bakteria, tisu longgar haiwan dan tumbuhan, testis, anthers, dll.
Apabila menghancurkan, perkara berikut harus diperhatikan: (1) Slaid kaca mesti bersih. (2) Slaid kaca mestilah rata. (3) Salutan mestilah seragam. Jatuhkan cecair smear di sebelah kanan pusat slaid kaca dan sebarkannya sama rata dengan pisau pisau atau tusuk gigi. (4) Salutan mesti nipis. Gunakan slaid kaca lain sebagai penolak dan perlahan -lahan menolak dari kanan ke kiri sepanjang permukaan slaid kaca dengan cecair smear (sudut antara kedua -dua slaid kaca hendaklah 30 darjah -45 darjah) untuk membentuk lapisan nipis seragam. (5) Penetapan. Sekiranya penetapan diperlukan, kaedah pengeringan atau kaedah pengeringan kimia (bakteria) boleh digunakan untuk penetapan. (6) Pewarnaan. Methylene Blue digunakan untuk bakteria, noda Wright digunakan untuk darah, dan iodin kadang -kadang boleh digunakan. Cecair pewarnaan harus menutupi seluruh permukaan smear. (7) Bilas. Keringkan dengan kertas penyerap atau bakar kering. (8) Pengedap. Untuk penyimpanan jangka panjang, gunakan gusi Kanada untuk menutup slaid.
2. Kaedah menekan adalah kaedah meletakkan bahan biologi di antara slaid dan slip penutup, menggunakan tekanan tertentu, dan memerah sel -sel tisu.
3. Kaedah pelekap adalah kaedah pengetatan bahan biologi secara keseluruhan untuk membuat spesimen slaid. Kaedah ini boleh digunakan untuk membuat slaid sementara atau kekal.
Bahan -bahan untuk slaid pemasangan termasuk: mikroorganisma seperti Chlamydomonas, Spirogyra, Amoeba, Nematodes; Hydra, epidermis daun tumbuhan; Sayap serangga, kaki, mulut, sel epitel oral manusia, dll.
Apabila membuat kaedah pelekap, perhatikan yang berikut: (1) Apabila memegang slaid, pastikan untuk memastikan ia rata atau letakkan di platform. Apabila menetes air, jumlah air sepatutnya sesuai, supaya ia hanya dilindungi oleh slip penutup. (2) Bahan hendaklah disebarkan dengan jarum atau pinset yang membedah tanpa bertindih dan diratakan pada satah yang sama. (3) Apabila meletakkan slip penutup, perlahan -lahan menutupnya pada penurunan air dari satu sisi untuk mengelakkan gelembung. (4. Selepas pewarnaan, gunakan kaedah yang sama untuk menjatuhkan setitik air bersih, menyerap cecair pewarnaan, dan perhatikan di bawah mikroskop.
4. Bahagian adalah spesimen slaid yang dibuat dari kepingan nipis yang dipotong dari organisma.
Oleh kerana keperluan yang berbeza, anda boleh menggunakan bilah untuk mengiris dengan tangan, atau membenamkan blok tisu di parafin atau collodion atau membekukannya pada suhu rendah dan mengirisnya dengan microtome. Potong ke dalam irisan mikron 5-10 untuk pemerhatian mikroskop optik. Hirisan ultra tipis dipotong dari blok tisu yang tertanam dalam resin epoksi atau asid methacrylic mempunyai ketebalan nanometer 20-50 dan khusus untuk pemerhatian di bawah mikroskop elektron. Bahagian tip akar dan batang yang digunakan untuk pengajaran umum umumnya dipanggil bahagian parafin.